قسم الانسجة والوراثة

المزيد ...

حول قسم الانسجة والوراثة

بدأ التدريس بالقسم في العام الجامعي 74/1975م. كجزء من قسم التشريح ويقوم القسم بتدريس طلاب السنة الأولى طب ، ويتناول المنهج دراسة التراكيب المجهرية الضوئية والإلكترونية لأنسجة وأعضاء جسم الانسان المختلفة، وربط هذه التراكيب بالوظائف الطبيعية لها. ويقوم قسم علم الأنسجة والوراثة بالتدريس، وإجراء البحوث في المجالات التطبيقية لعلم الأنسجة، كيمياء الخلايا والوراثة الخلوية التشخيصية والإحصائية. ويشكل قسم الأنسجة إحد الدعامات الهامة للدراسة في كلية الطب منذ إنشائها، حيث يقوم القسم بتدريس علم الأنسجة العام والجهازي والوراثة الطبية لجميع طلبة وطالبات الكليات الطبية ( كلية الطب، وكلية طب وجراحة الفم والأسنان ، وكلية الصيدلة) وطلبة الدراسات العليا حسب البرنامج المعد لكل فئة. هذا ويحرص القسم حرصاً كاملاً على ربط المنهج بكل جديد في مجالات الأبحاث الطبية والتقنيات الحيوية بما يتناسب ومجال الدراسة لكل فئة، كما يولي القسم اهتماماً خاصاً بالناحية التطبيقية للعلوم الأساسية وربطها بالعلوم السريرية.  وإضافة إلي ماسبق فإن القسم يشكل حلقة وصل بين العلوم الأساسية والسريرية حيث يساهم مساهمة فعالة في تشخيص الأمراض الوراثية الصبغية ،كما يحرص على التعاون البناء والمتكافئ بين مختلف الجامعات داخل وخارج ليبيا ويقوم أعضاء هيئة التدريس بالقسم بإجراء أبحاث بالقسم بالتعاون مع الأقسام والكليات الأخرى في جامعة طرابلس، والجامعات خارج ليبيا في الأمراض الوراثية ، وزراعة الخلايا وتأثير بعض الأدوية على الأجزاء المختلفة في الجسم وعلى التركيب الكيميائي للخلايا في الحيوانات المعملية.

يحتوي القسم على أربعة أجنحة :ـ

  • جناح معامل الطلبة ويحتوي على ثلاثة معامل رئيسة تتسع لخمسين طالباً وبعض المعامل الصغيرة التحضيرية الملحقة بها. ومعمل تحضير الشرائح التعليمية.و به قسم للدراسات العليا
  • جناح المناقشات ويحتوي على أربع قاعات للمناقشة.
  • جناح أعضاء هيئة التدريس الذي يحتوي على مكاتب للأساتذة ومكتبة القسم، وقاعة الاجتماعات.
  • جناح الأبحاث ويحتوي على أربعة معامل رئيسية للبرافين والصبغات وزراعة الخلايا وكيمياء الخلايا والأنسجة بالإضافة إلي ثمانية معامل تحضيرية ومعمل تصوير.كما يضم احدث الأجهزة و التي تم تجهيزها مؤخرا
  • و يشمل عدة وحدات بحثية كوحدة المجهر الالكتروني الماسح و ملحقاته، وحدةعمل مزرعة الانسجة و حدة الجينات الخلوية ووحدة الانسجة العامة

حقائق حول قسم الانسجة والوراثة

نفتخر بما نقدمه للمجتمع والعالم

26

المنشورات العلمية

11

هيئة التدريس

من يعمل بـقسم الانسجة والوراثة

يوجد بـقسم الانسجة والوراثة أكثر من 11 عضو هيئة تدريس

staff photo

د. عبد الحكيم شعبان شعبان النفاتي

عبد الحكيم النفاتي هو احد اعضاء هيئة التدريس بقسم علم الانسجة و الوراثة بكلية الطب البشري يعمل السيد عبد الحكيم النفاتي بجامعة طرابلس كـاستاذ مساعد منذ 15-1-2016 وله العديد من المنشورات العلمية في مجال تخصصه

منشورات مختارة

بعض المنشورات التي تم نشرها في قسم الانسجة والوراثة

Cerebellar Organotypic Slice Culture System: A Model of Developing Brain Ischaemia

Ischaemic injury during brain development correlates with long-term neurological problems resulting in part from oligodendrocytes (OL) damage and a loss of appropriate myelination. The molecular and cellular mechanisms responsible remain partially understood and there is no effective clinical treatment. Here we develop and characterise an ex-vivo slice culture ischaemia model to elucidate the cellular mechanisms to aid the search for therapeutic interventions. Cerebellar slices from 7 day-old rats were cultured for 10 days and their developmental profile in culture and their response to oxygen-glucose deprivation (OGD) was assessed. During the culture period development of white matter progressed as in-vivo, the numbers of oligodendrocyte precursor cells (OPC) decreased and the numbers of mature OLs increased and there was extensive myelination of axons as judged by colocalisation of myelin basic protein and neurofilament. Cultured slices were exposed to a short period of OGD at 7 days in-vitro and reperfused to mimic in-vivo conditions. Twenty minutes of OGD was found to result in significant injury as judged by a 58.6% reduction in cell viability 3 days post-injury. Treatment of cultures with OGD resulted in a loss of OLs and a loss of myelination of axons. In summary we have developed a paradigm for studying the damage to OLs and loss of myelination associated with ischaemic periods during development which should facilitate the search for understanding the mechanisms responsible and identifying potential therapeutic interventions.
Mohamed A M Al Griw , Mohamed A. Al-Griw, Ian C. Wood, Michael G. Salter(11-2017)
Publisher's website

Mode of Cell Death in Mouse Brain Following Early Exposure to Low-Dose Trichloroethane: Apoptosis or Necrosis

The goal of this study was to investigate, in-vivo, the predominant mechanism of cell death, apoptosis versus necrosis, in the mature mouse brain exposed early to a ubiquitous environmental toxicant trichloroethane (TCE). A subset of male albino mice was injected intraperitoneally twice weekly for three weeks with TCE (100 and 400µg/kg). All animals were followed up for signs of toxicity and mortality. Changes in neural tissues were histpathologically evaluated. Biomarkers of brain cell number were also studied. The results showed that TCE insult triggered significant alterations in the microstructure of the brain tissues compared to controls. Mitotic figures and apoptotic changes such as chromatin condensation and nuclear fragments were also identified. Cell death analysis demonstrates that cell apoptosis with necrosis was evident in the TCE-treated groups. The percent of necrosis was quantified as 20.09 ± 2.57% at 100µg/kg TCE, 30.57 ± 5.18% at 400µg/kg TCE, and 12.67 ± 1.25% in controls. However, the percent of apoptosis was quantified as 29.18 ± 1.51% at 100µg/kg TCE, 20.14 ± 2.12% at 400µg/kg TCE, and 8 ± 1.25% in controls. There was also a significant reduction in the brain DNA content in the TCE-treated groups. Agarose gel electrophoresis is also provided further biochemical evidence of apoptosis by showing internucleosomal DNA fragmentation. These results correlated with neurobehavioral impairment. These findings indicate that TCE induces degeneration and apoptotic cell death in mouse brain, suggesting a crucial role played by apoptosis in TCE neurotoxicity.
Mohamed A. Al-Griw, Abdul Hakim Elnfati, Naser M. Salama, Massaud S. Maamar, Soad A. Treesh, Taher Shaibi(10-2015)
Publisher's website

Effects of storage temperature on the quantity and integrity of genomic DNA extracted from mice tissues: A comparison of recovery methods

Efficient extraction of genomic DNA (gDNA) from biological materials found in harsh environments is the first step for successful forensic DNA profiling. This study aimed to evaluate two methods for DNA recovery from animal tissues (livers, muscles), focusing on the best storage temperature for DNA yield in term of quality, quantity, and integrity for use in several downstream molecular techniques. Six male Swiss albino mice were sacrificed, liver and muscle tissues (n=32) were then harvested and stored for one week in different temperatures, -20C, 4C, 25C and 40C. The conditioned animal tissues were used for DNA extraction by Chelex-100 method or NucleoSpin Blood and Tissue kit. The extracted gDNA was visualized on 1.5% agarose gel electrophoresis to determine the quality of gDNA and analysed spectrophotometrically to determine the DNA concentration and the purity. Both methods, Chelex-100 and NucleoSpin Blood and Tissue kit found to be appropriate for yielding high quantity of gDNA, with the Chelex100 method yielding a greater quantity (P < 0.045) than the kit. At -20C, 4C, and 25C temperatures, the concentration of DNA yield was numerically lower than at 40C. The NucleoSpin Blood and Tissue kit produced a higher (P=0.031) purity product than the Chelex-100 method, particularly for muscle tissues. The Chelex-100 method is cheap, fast, effective, and is a crucial tool for yielding DNA from animal tissues (livers, muscles) exposed to harsh environment with little limitations.
Huda H. Al-Griw, Zena A. Zraba, Salsabiel K. Al-Muntaser, Marwan M. Draid, Aisha M. Zaidi, Refaat M. Tabagh , Mohamed A. Al-Griw(8-2017)
Publisher's website